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GFP免疫組化

來源: 發(fā)布時間:2024-04-20

其他熒光物質:酶作用后產生熒光的物質某些化合物本身無熒光效應,一旦經酶作用便形成具有強熒光的物質。例如4-甲基傘酮-β-D半乳糖苷受β-半乳糖苷酶的作用分解成4-甲基傘酮,后者可發(fā)出熒光,激發(fā)光波長為360nm,發(fā)射光波長為450nm。其他如堿性酸酶的底物4-甲基傘酮磷酸鹽和辣根過氧化物酶的底物對羥基乙酸等。鑭系螯合物某些3價稀土鑭系元素如銪(Eu3)、鋱(Tb3)、鈰(Ce3)等的螯合物經激發(fā)后也可發(fā)射特征性的熒光,其中以Eu3應用較廣。Eu3螯合物的激發(fā)光波長范圍寬,發(fā)射光波長范圍窄,熒光衰變時間長,較適合用于分辨熒光免疫測定。免疫熒光技術可以通過熒光顯微鏡觀察樣品中的熒光信號,從而確定目標分子的存在和位置。GFP免疫組化

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免疫熒光Coons等于1941年初次采用熒光素進行標記而獲得成功。這種以熒光物質標記抗體而進行抗原定位的技術稱為熒光抗體技術。用熒光抗體示蹤或檢查相應抗原的方法稱熒光抗體法;用已知的熒光抗原標記物示蹤或檢查相應抗體的方法稱熒光抗原法。這兩種方法總稱免疫熒光技術,因為熒光色素不但能與抗體球蛋白結合,用于檢測或定位各種抗原,也可以與其他蛋白質結合,用于檢測或定位抗體,但是在實際工作中熒光抗原技術很少應用,所以人們習慣稱為熒光抗體技術,或稱為免疫熒光技術。以熒光抗體方法較常用。用免疫熒光技術顯示和檢查細胞或組織內抗原或半抗原物質等方法稱為免疫熒光細胞(或組織)化學技術。GFP免疫組化免疫熒光技術是將抗體與熒光素等示蹤物質結合,通過抗原抗體反應進行定位。

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熒光的猝滅:熒光分子的輻射能力在受到激發(fā)光較長時間的照射后會減弱甚至猝滅,這是由于激發(fā)態(tài)分子的電子不能回復到基態(tài),所吸收的能量無法以熒光的形式發(fā)射。一些化合物有天然的熒光猝滅作用而被用作猝滅劑,以消除不需用的熒光。因此熒光物質的保存應注意避免光(特別是紫外光)的直接照射和與其他化合物的接觸。在熒光抗體技術中常用一些非熒的色素物質如亞甲藍、堿性復紅。伊文思藍或低濃度的過錳酸鉀、碘溶液等對標本進行得當復染,以減弱非特異性熒光本質,使特異熒光更突出顯示。

免疫熒光實驗步驟:1.樣本準備:細胞或薄組織。對單層生長細胞,在傳代培養(yǎng)時,將細胞接種到預先放置有處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中,待細胞接近長成單層后取出蓋玻片,PBS洗兩次;對懸浮生長細胞,取對數生長細胞,用PBS離心洗滌(1000rpm,5min)2次,用細胞離心甩片機制備細胞片或直接制備細胞涂片。2.固定:取適當的固定劑固定樣本。一般用4%PFA固定4℃過夜。固定完畢后的樣本可置于含疊氮納的PBS中4℃保存3個月。3.洗滌:PBS洗滌5min*3次。4.打孔:選擇合適的通透劑處理樣本,目的是使抗體更容易進入細胞與抗原結合。免疫熒光技術可以用于研究環(huán)境污染和毒物作用。

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細胞免疫熒光實驗注意事項:非特異性染色:是否滅活內源性過氧化物酶;孵育過程中干片;抗原熱修復過度。染色過深:一抗?jié)舛冗^高;染色試濃度過高或孵育時間過長;染色劑濃度過高或孵育時間過長。通常實驗室先固定細胞再進行通透,但若檢測抗原是水不溶性蛋白,可先通透再固定,這樣可以通過通透去除一些水溶性蛋白,進而可降低免疫熒光背景和非特異性信號;建議設陰性對照組,消除由于抗體非特異性結合而產生的背景染色;選擇醛類固定液時,保持其新鮮度,較好現配現用,使用不新鮮的醛類固定液自發(fā)熒光背景會升高。熒光抗體技術可以用于檢測和定位細胞或組織中的特定抗原物質。CD19免疫熒光分析

熒光抗原法是利用已知的熒光標記物來追蹤或檢查相應抗體的方法。GFP免疫組化

細胞免疫熒光:細胞種板與細胞爬片制備:1) 細胞密度在90%-95%左右,用預熱胰酶消化細胞后重懸細胞于完全培養(yǎng)基中,充分吹打,使之成單細胞懸液,計數。2)取細胞培養(yǎng)12孔板,在每個孔放爬片的位置根據爬片的大小,先在每個孔里準備放爬片的位置滴幾滴培養(yǎng)基,然后將爬片置于液滴上,壓緊,使爬片與培養(yǎng)皿靠培養(yǎng)基的張力粘合到一起,防止加細胞懸液時爬片漂起,造成雙層細胞貼片。根據自己的需要選擇合適的細胞密度種入12孔板培養(yǎng)板內。3)24h或者48h后,根據細胞生長速度快慢,觀察判斷細胞密度,約90%時進行細胞免疫熒光。GFP免疫組化

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