細(xì)胞凍存步驟說(shuō)明：配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養(yǎng)液;取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞，去除舊培養(yǎng)液，用PBS清洗。去除PBS，加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養(yǎng)皿表面)把單層生長(zhǎng)的細(xì)胞消化下來(lái);離心1000rpm，5min;去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養(yǎng)液，用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻，計(jì)數(shù)，調(diào)節(jié)存液中細(xì)胞的較終密度為5×106/ml~1×107/ml;將細(xì)胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml;在凍存管上標(biāo)明細(xì)胞的名稱(chēng)，凍存時(shí)間及操作者;凍存:標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1~-2℃/min;當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時(shí)，可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時(shí)，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細(xì)胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過(guò)夜，取出凍存管，移入液氮容器內(nèi)。含多種保護(hù)劑成分,一些保護(hù)劑,易于穿透細(xì)胞。天津正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液銷(xiāo)售廠家

無(wú)血清細(xì)胞凍存液與含血清細(xì)胞凍存液對(duì)比：傳統(tǒng)的細(xì)胞凍存液是使用培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統(tǒng)稱(chēng)為含血清細(xì)胞凍存液。含血清細(xì)胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個(gè)小時(shí)（或隔夜），較后才移至液氮罐中進(jìn)行長(zhǎng)期的儲(chǔ)存?？梢?jiàn)，含血清細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞時(shí)遇到的問(wèn)題：1.凍存細(xì)胞時(shí)需現(xiàn)配凍存液(如購(gòu)買(mǎi)市面上通用的含血清細(xì)胞凍存液，此步可省略)。2.需要程序降溫（4℃→-20℃→-80℃→液氮），步驟繁瑣，耗時(shí)耗力。3.含血清，細(xì)胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風(fēng)險(xiǎn)更高。4.血清批次、品質(zhì)間差異導(dǎo)致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。唐山正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹從冰箱里取出細(xì)胞冷凍保存管，立即放入37℃振動(dòng)水浴槽中快速解凍。

干細(xì)胞無(wú)血清凍存液操作事項(xiàng)：使用說(shuō)明：1.細(xì)胞消化和計(jì)數(shù)，用胰酶對(duì)待凍存的細(xì)胞進(jìn)行消化，并對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。2.1000轉(zhuǎn)/min離心5分鐘（4℃），去掉上清。3.根據(jù)細(xì)胞計(jì)數(shù)的情況，加入適量的干細(xì)胞無(wú)血清凍存液，使細(xì)胞密度在1×106左右（或根據(jù)自己希望達(dá)到的細(xì)胞密度）。4.輕輕地重懸細(xì)胞（務(wù)必重懸均勻）。5.將重懸的細(xì)胞按等份加入到滅菌的凍存管（需提前做好標(biāo)記或者貼上標(biāo)簽）中，旋緊凍存管蓋。6.將凍存管放入凍存盒中，然后將凍存盒直接放入-80℃。7.第二天將細(xì)胞從-80℃轉(zhuǎn)移到液氮中。注意事項(xiàng)：1.用處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行凍存。2.控制好胰酶的消化時(shí)間，切記消化過(guò)度，會(huì)影響復(fù)蘇效果。3.重懸細(xì)胞的過(guò)程中，請(qǐng)務(wù)必要輕柔，以免損傷細(xì)胞，但同時(shí)也一定要充分重懸，這樣細(xì)胞在復(fù)蘇時(shí)才不會(huì)成團(tuán)。4.細(xì)胞操作請(qǐng)注意無(wú)菌。

細(xì)胞凍存液是如何保護(hù)細(xì)胞的：當(dāng)溫度進(jìn)一步下降，細(xì)胞內(nèi)外都結(jié)冰，產(chǎn)生冰晶損傷。但是如果在溶液中加入冷凍保護(hù)劑，則可保護(hù)細(xì)胞免受溶質(zhì)損傷和冰晶損傷。因?yàn)槔鋬霰Ｗo(hù)劑容易同溶液中的水分子結(jié)合，從而降低冰點(diǎn)，減少冰晶的形成，并且通過(guò)其摩爾濃度降低未結(jié)冰溶液中電解質(zhì)的濃度，使細(xì)胞免受溶質(zhì)損傷，細(xì)胞得以在較低溫條件下保存。在復(fù)蘇時(shí)，一般以很快的速度升溫，1-2分鐘內(nèi)即恢復(fù)到常溫，細(xì)胞內(nèi)外不會(huì)重新形成較大的冰晶，也不會(huì)暴露在高濃度的電解質(zhì)溶液中過(guò)長(zhǎng)的時(shí)間，從而無(wú)冰晶損傷和溶質(zhì)損傷產(chǎn)生，凍存的細(xì)胞經(jīng)復(fù)蘇后仍保持其正常的結(jié)構(gòu)和功能。冷凍保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞的冷凍保護(hù)效果還與冷凍速率、冷凍溫度和復(fù)溫速率有關(guān)。而且不同的冷凍保護(hù)劑其冷凍保護(hù)效果也不一樣。無(wú)血清細(xì)胞凍存液可用于T淋巴細(xì)胞、NK細(xì)胞等免疫細(xì)胞的存儲(chǔ)。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預(yù)熱的培養(yǎng)基到15mL的離心管中，加入的同時(shí)輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養(yǎng)基，使細(xì)胞沉淀完好無(wú)損。使用2mL血清移液管輕輕將細(xì)胞沉淀重懸于1mL的培養(yǎng)基中。小心保持細(xì)胞作為聚集體。4.將0.5mL的細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移到含有培養(yǎng)基的預(yù)包被的6孔板的培養(yǎng)孔中（例如，每個(gè)冷凍管可以鋪板兩個(gè)孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據(jù)凍存的細(xì)胞聚集體數(shù)量進(jìn)行調(diào)整。通常在復(fù)蘇后，要比在常規(guī)的傳代鋪板更多的細(xì)胞聚集體數(shù)量。將培養(yǎng)板放入37°C培養(yǎng)箱?？焖偾昂笞笥业膿u晃培養(yǎng)板數(shù)次，將細(xì)胞聚集體分布均勻。24小時(shí)內(nèi)不要移動(dòng)培養(yǎng)板。在細(xì)胞內(nèi)外進(jìn)行雙重保護(hù)，較大提高了細(xì)胞復(fù)蘇存活率。唐山正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹

當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時(shí)，可增至-5 ℃～-10℃/min。之前。天津正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液銷(xiāo)售廠家

細(xì)胞凍存秘籍：1.在倒置相差顯微鏡上每隔幾分鐘檢查酶處理的進(jìn)展情況。一旦細(xì)胞變圓，輕輕敲擊細(xì)胞瓶使其脫離塑料表面。加入5mL含血清的生長(zhǎng)培養(yǎng)基滅活胰酶。可能需要?jiǎng)×业囊埔翰僮鱽?lái)使培養(yǎng)容器底部的剩余細(xì)胞脫落，或?qū)⒓?xì)胞團(tuán)塊分解成單細(xì)胞懸浮液。胰酶的去除或失活對(duì)于冷凍細(xì)胞至關(guān)重要。如果游離試劑不能直接滅活，可以通過(guò)下一步的離心去除。2.用15ml離心管收集細(xì)胞。取出樣本進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)，剩余的細(xì)胞懸液以約100×g離心5分鐘以獲得細(xì)胞沉淀。離心時(shí)，用細(xì)胞計(jì)數(shù)板對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。使用臺(tái)盼藍(lán)染液檢查細(xì)胞的活性。天津正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液銷(xiāo)售廠家