細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細(xì)胞暫時脫離生長狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復(fù)蘇細(xì)胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細(xì)胞，可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種，起到了細(xì)胞保種的作用。為什么要進(jìn)行細(xì)胞凍存？連續(xù)培養(yǎng)的細(xì)胞系容易發(fā)生遺傳漂變，有限細(xì)胞系較終會發(fā)生衰老，所有培養(yǎng)的細(xì)胞都易受到微生物污染，即使運(yùn)轉(zhuǎn)情況較好的實驗室也會遇到設(shè)備故障的問題。由于已建立的細(xì)胞系是一種寶貴資源，更換細(xì)胞系成本高昂，而且耗費時間，因此，十分有必要將細(xì)胞冷凍起來長期保存。除此之外，還可以利用細(xì)胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運(yùn)送某些細(xì)胞。細(xì)胞存儲中對細(xì)胞凍存更有特殊要求。上海石家莊無血清細(xì)胞凍存液

隨著細(xì)胞治理以及細(xì)胞儲存產(chǎn)業(yè)發(fā)展，細(xì)胞凍存也面臨從科研應(yīng)用走向產(chǎn)業(yè)轉(zhuǎn)化。凍存要求發(fā)生改變，因為凍存細(xì)胞要進(jìn)行臨床應(yīng)用，所以凍存液成分由原來血清變?yōu)闊o血清，無動物源成分，凍存液中使用的所有原料均應(yīng)符合臨床或藥物需求。隨著細(xì)胞凍存數(shù)量增加，凍存流程簡化也成為必然趨勢，因此無血清非程序降溫凍存液應(yīng)運(yùn)而生。目前針對細(xì)胞治理領(lǐng)域，推出一款即用型的無血清細(xì)胞凍存液，這款產(chǎn)品是細(xì)胞凍存研究的革新，主要具有幾大特點，凍存液無血清成分、無需配制直接使用、無需程序降溫盒、不需分步降溫、即用型細(xì)胞凍存液。該款凍存液適用于臍帶、脂肪、等間充質(zhì)干細(xì)胞，免疫細(xì)胞以及大多數(shù)細(xì)胞系凍存。同時該款所有成分均使用藥用級原料配制而成，完全適應(yīng)細(xì)胞儲存，細(xì)胞治理以及科學(xué)研究等不同場景使用唐山無血清細(xì)胞凍存液直銷價無血清細(xì)胞凍存液存儲條件：為避免重復(fù)凍融過程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低。

無血清細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞實驗步驟：選擇凍存處于對數(shù)生長期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2.按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計算所需凍存細(xì)胞數(shù)。（參考：5×105至5×106cells/ml）。3.取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無血清型細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。5.將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱，長期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時，可將完全凍結(jié)的凍存管（放入-80℃冰箱后至少一晝夜）移至-196℃液氮罐。

細(xì)胞凍存秘籍：1.在倒置相差顯微鏡上每隔幾分鐘檢查酶處理的進(jìn)展情況。一旦細(xì)胞變圓，輕輕敲擊細(xì)胞瓶使其脫離塑料表面。加入5mL含血清的生長培養(yǎng)基滅活胰酶?？赡苄枰獎×业囊埔翰僮鱽硎古囵B(yǎng)容器底部的剩余細(xì)胞脫落，或?qū)⒓?xì)胞團(tuán)塊分解成單細(xì)胞懸浮液。胰酶的去除或失活對于冷凍細(xì)胞至關(guān)重要。如果游離試劑不能直接滅活，可以通過下一步的離心去除。2.用15ml離心管收集細(xì)胞。取出樣本進(jìn)行細(xì)胞計數(shù)，剩余的細(xì)胞懸液以約100×g離心5分鐘以獲得細(xì)胞沉淀。離心時，用細(xì)胞計數(shù)板對細(xì)胞進(jìn)行計數(shù)。使用臺盼藍(lán)染液檢查細(xì)胞的活性。無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品特色：各批產(chǎn)品之間有更高的產(chǎn)品質(zhì)量一致性。

細(xì)胞凍存和復(fù)蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細(xì)胞的活力。凍存細(xì)胞不加任何保護(hù)劑，會導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)冰晶的產(chǎn)生，從而使細(xì)胞產(chǎn)生內(nèi)源性的機(jī)械損傷，引起細(xì)胞內(nèi)環(huán)境滲透壓，PH，電解質(zhì)等的改變，進(jìn)而促使細(xì)胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細(xì)胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉(zhuǎn)移使其達(dá)到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時間一般比較短，不能滿足時間跨度大的實驗項目的需求。且這樣人力和時間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實驗結(jié)果帶來了不穩(wěn)定性。血清批次、品質(zhì)間差異導(dǎo)致凍存液的批次間差異。上海石家莊無血清細(xì)胞凍存液

無血清細(xì)胞凍存液：降低細(xì)胞外溶液的電解質(zhì)濃度，減少陽離子進(jìn)入細(xì)胞的數(shù)量。上海石家莊無血清細(xì)胞凍存液

細(xì)胞凍存注意事項：離心問題：目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng)，第二天換液。因為離心的目的是兩個，去除DMSO，去除死細(xì)胞，這個是標(biāo)準(zhǔn)流程，但對一般人來說，把握不好離心轉(zhuǎn)速和時間，轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少，細(xì)胞就全被扔掉了，轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會受壓過大，死亡。此外在操作過程中容易污染，所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜（DMSO），DMSO對細(xì)胞有一定的毒副作用，所以須將離心后的液體前倒凈，且一定倒干凈。我在試驗中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇，結(jié)果無有異常。上海石家莊無血清細(xì)胞凍存液