原代細(xì)胞的獲取：1.培養(yǎng)時(shí)間無論是酶消化法還是組織塊法，取樣后培養(yǎng)時(shí)間較少需要一周以上的時(shí)間，期間可換液或者傳代。2.換液時(shí)間無論酶消化法還是組織塊法，在培養(yǎng)期間需要隨時(shí)關(guān)注細(xì)胞的生長狀況，需觀察其是否貼壁，是否污染，組織塊法要觀察是否有細(xì)胞遷移出來。正常情況下48~72h可換液一次。3.細(xì)胞狀態(tài)判斷正常貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)幾天后，會逐漸貼滿整個(gè)瓶底或者皿底，有的呈纖維狀，有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細(xì)胞圖（左：小鼠成纖維細(xì)胞；右：雞胚成纖維細(xì)胞；下：人成纖維細(xì)胞）。原代細(xì)胞是指從機(jī)體取出后立即培養(yǎng)的細(xì)胞。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家

原代細(xì)胞體外培養(yǎng)現(xiàn)狀：原代細(xì)胞自然生長有兩種方式，錨定依賴或非錨定依賴，這主要取決于它們在體內(nèi)的組織來源：外周血（非錨定依賴）或固體組織部位（錨定依賴）。原代細(xì)胞一旦分離后，24-48h內(nèi)需要進(jìn)行貼壁或起始，開始培養(yǎng)。廣義地說，所有的哺乳動物細(xì)胞，無論其類型或來源，都需要在與人類生理?xiàng)l件非常相似的條件下生長。此外，它們還需要一個(gè)pH可調(diào)節(jié)的生長環(huán)境，并且培養(yǎng)基中需包含細(xì)胞類型特定的營養(yǎng)因子、生長因子、葡萄糖和/或物品。為了確定一種特定細(xì)胞類型在低至無血清培養(yǎng)基中正常生長和功能所需的較低條件，相關(guān)研究工作已經(jīng)揭示了生長培養(yǎng)基必須包含的基本成分：胰島素、轉(zhuǎn)鐵蛋白、葡萄糖和各種鹽、維生素和氨基酸1。然而，除此之外培養(yǎng)基也可以含有組織和細(xì)胞特異性細(xì)胞因子和增殖、生存所需的生長因子。例如，原代內(nèi)皮細(xì)胞和血管平滑肌細(xì)胞都需要添加L-谷氨酰胺和成纖維細(xì)胞生長因子（FGF），但是，應(yīng)該添加額外的組織特異性因子，以防止成纖維細(xì)胞的生長。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家貼壁細(xì)胞多來自部位組織，而懸浮細(xì)胞多來自血液系統(tǒng)的細(xì)胞。

取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞，盡快入箱培養(yǎng)，若不能即時(shí)培養(yǎng)，應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi)，于4℃存放。若組織塊較大，應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后，切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放，但時(shí)間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基，按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應(yīng)嚴(yán)格無菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無菌條件下進(jìn)行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應(yīng)將所取組織在含高濃。

取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞，盡快入箱培養(yǎng)，若不能即時(shí)培養(yǎng)，應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi)，于4℃存放。若組織塊較大，應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后，切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放，但時(shí)間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基，按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應(yīng)嚴(yán)格無菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無菌條件下進(jìn)行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應(yīng)將所取組織在含高濃取樣后培養(yǎng)時(shí)間較少需要一周以上的時(shí)間，期間可換液或者傳代。

傳代接種：當(dāng)原代培養(yǎng)瓶中的細(xì)胞已經(jīng)生長且布滿了所有可用的培養(yǎng)基質(zhì)后，它們必須進(jìn)行傳代以便為繼續(xù)生長提供空間。這通常需要將細(xì)胞盡可能輕柔地從基質(zhì)上用胰酶消化下來。這些酶類似于原代培養(yǎng)中使用的酶，它能夠打斷使細(xì)胞粘附到基質(zhì)上的蛋白鍵。有些細(xì)胞株可以通過輕輕刮除培養(yǎng)瓶底部的細(xì)胞加以收集。收集之后，將細(xì)胞懸液進(jìn)行進(jìn)一步的分散并置于新的培養(yǎng)瓶中。當(dāng)細(xì)胞過多時(shí)，則可以用合適的低溫保護(hù)的試劑，如二甲基亞砜或甘油進(jìn)行小心冰凍，然后置于低溫環(huán)境（－130℃以下）中，直到需要再次使用。能夠進(jìn)行懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞，其生命力一般都比較旺盛。蕪湖原代細(xì)胞分離試劑盒生產(chǎn)廠家

培養(yǎng)時(shí)間無論是酶消化法還是組織塊法。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家

原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)：1.收到細(xì)胞時(shí)，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細(xì)胞的前幾天，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細(xì)胞出現(xiàn)問題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細(xì)胞后，不要馬上處理。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過夜。3.細(xì)胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細(xì)胞傳代密度低，很難長起來。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時(shí)（內(nèi)皮細(xì)胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細(xì)胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細(xì)胞不建議凍存，因?yàn)閮龃婧苋菀讖?fù)活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，置于37-38度水浴融化細(xì)胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，也可以使用這種比例，復(fù)蘇成活率會較大提高），離心重懸鋪板。金華原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家