DNA細(xì)胞轉(zhuǎn)染步驟:1.提前現(xiàn)在細(xì)胞鋪板提前現(xiàn)在將細(xì)胞種植在24孔板中,以轉(zhuǎn)染時細(xì)胞密度在60%左右為宜。2.轉(zhuǎn)染過程⑴將0.8μg的DNA用25μl無血清稀釋液稀釋,充分混勻,制成DNA稀釋液。注意:無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。⑵將2μlEntransterTM-H4000用25μl無血清稀釋液體稀釋,充分混勻,制成EntransterTM-H4000稀釋液。室溫靜置5分鐘。⑶將EntransterTM-H4000稀釋液分別加入到DNA稀釋液中,充分混勻(可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上),室溫靜置15分鐘。轉(zhuǎn)染復(fù)合物制備完成。⑷將轉(zhuǎn)染復(fù)合物加入到含細(xì)胞和完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)容器上,輕柔混勻。注意:①對本試劑,采用含血清的全培養(yǎng)基有助于提升轉(zhuǎn)染效率。②完全培養(yǎng)基可加物品。細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。金華細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.不注意細(xì)節(jié)在轉(zhuǎn)染之前更換一次37℃預(yù)溫的培養(yǎng)基,可提高轉(zhuǎn)染效率。脂質(zhì)體和DNA/RNA混合物應(yīng)當(dāng)一滴一滴地滴下來,從培養(yǎng)皿一邊滴到另一邊,邊滴邊輕搖培養(yǎng)皿,以確保均勻分布和避免局部高濃度。這些都是一些細(xì)枝末節(jié),但是,如果不注意的話,也會造成轉(zhuǎn)染效率低下。2.細(xì)胞狀態(tài)不好細(xì)胞狀態(tài)不好,會導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低下。一般進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。如果是貼壁細(xì)胞的話,貼壁率應(yīng)該在70-80%;如果是懸浮細(xì)胞的話,應(yīng)該是6X105個/孔(24孔板),一般是轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在換液,轉(zhuǎn)染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細(xì)胞一次。轉(zhuǎn)染的整個過程都不應(yīng)該有物品。長沙正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪家便宜瞬時和穩(wěn)定表達(dá)DNA轉(zhuǎn)染后,轉(zhuǎn)入基因的表達(dá)可以在1-4天內(nèi)檢測到。
轉(zhuǎn)染的注意事項:細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細(xì)胞密度為70%-90%,懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細(xì)胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細(xì)胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量。在三種不同密度進(jìn)行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細(xì)胞密度而異
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項:血清A、DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不能含血清,因為血清會影響復(fù)合物的形成。B、一般細(xì)胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題,轉(zhuǎn)染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加,但血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率,轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進(jìn)行優(yōu)化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細(xì)胞,可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細(xì)胞,建議使用**轉(zhuǎn)染試劑。有條件的話,可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細(xì)胞兩遍,注意洗的時候要輕,靠邊緣緩緩加入液體,然后不要吹吸細(xì)胞而是轉(zhuǎn)動培養(yǎng)板讓液體滾動在細(xì)胞表面。如果洗的太厲害,細(xì)胞又損失一部分,加了脂質(zhì)體后,細(xì)胞受影響就更大了,死亡細(xì)胞會增多形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負(fù)電的細(xì)胞膜吸附。
DNA細(xì)胞轉(zhuǎn)染步驟:1.提前現(xiàn)在細(xì)胞鋪板提前現(xiàn)在將細(xì)胞種植在24孔板中,以轉(zhuǎn)染時細(xì)胞密度在60%左右為宜。2.轉(zhuǎn)染過程⑴將0.8μg的DNA用25μl無血清稀釋液稀釋,充分混勻,制成DNA稀釋液。注意:無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。⑵將2μlEntransterTM-H4000用25μl無血清稀釋液體稀釋,充分混勻,制成EntransterTM-H4000稀釋液。室溫靜置5分鐘。⑶將EntransterTM-H4000稀釋液分別加入到DNA稀釋液中,充分混勻(可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上),室溫靜置15分鐘。轉(zhuǎn)染復(fù)合物制備完成。⑷將轉(zhuǎn)染復(fù)合物加入到含細(xì)胞和完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)容器上,輕柔混勻。注意:①對本試劑,采用含血清的全培養(yǎng)基有助于提升轉(zhuǎn)染效率。轉(zhuǎn)染技術(shù)轉(zhuǎn)染是將外源遺傳物質(zhì)導(dǎo)入真核細(xì)胞的過程,是細(xì)胞和分子生物學(xué)研究的重要工具。濟南細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家
再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進(jìn)入細(xì)胞。金華細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨
細(xì)胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細(xì)胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預(yù)實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細(xì)胞,是否加血清,對不同的細(xì)胞是有不同的影響的,有些細(xì)胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉(zhuǎn)染試劑對細(xì)胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細(xì)胞的死亡。轉(zhuǎn)染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時加入。加入過早會引起未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細(xì)胞死亡??蓪崟r觀察1/5細(xì)胞變圓的時候加入血清。金華細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家現(xiàn)貨