目前有 210 +種不同種類的支原體分布于人類、動(dòng)物、昆蟲和植物中,其中 20 +種在細(xì)胞培養(yǎng)中被發(fā)現(xiàn)為污染物。支原體在實(shí)驗(yàn)室中的傳播來源多種多樣,主要來源包括實(shí)驗(yàn)室人員、胎牛血清(FBS)或新生牛血清(NBS)、以及由豬來源的胰蛋白酶溶液。此外,來自其他實(shí)驗(yàn)室或商業(yè)供應(yīng)商的細(xì)胞培養(yǎng)物、培養(yǎng)基、污染的試劑;非無菌供應(yīng)品、培養(yǎng)基和溶液;實(shí)驗(yàn)室人員;培養(yǎng)箱;液氮;空氣顆粒和氣溶膠;抗*素的過度使用;細(xì)胞培養(yǎng)器皿的不正確密封;以及其他的支原體細(xì)胞培養(yǎng)物等都可能成為支原體的傳播途徑。
支原體檢測(cè)方法qPCR法?上海細(xì)胞培養(yǎng)支原體檢測(cè)試劑價(jià)格
檢測(cè)新鮮培養(yǎng)基是否有支原體污染,可以采用以下五種方案:
1. 培養(yǎng)法:這是一種傳統(tǒng)且可靠的方法,通過將培養(yǎng)基接種到適宜支原體生長(zhǎng)的微生物培養(yǎng)基或瓊脂平板上,觀察是否有支原體生長(zhǎng)。這種方法較為耗時(shí),但成本較低。
2. 熒光染色法:使用特定的熒光染料(如Hoechst 33258)對(duì)細(xì)胞進(jìn)行染色,然后在熒光顯微鏡下觀察。如果存在支原體污染,可以看到細(xì)胞表面或細(xì)胞間隙中支原體DNA的熒光染色。
3. PCR法:通過設(shè)計(jì)針對(duì)支原體特定序列的引物,利用PCR技術(shù)特異性擴(kuò)增目標(biāo)DNA。PCR產(chǎn)物通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),如果出現(xiàn)條帶則表明存在支原體污染。
4. 電鏡觀察法:使用電子顯微鏡直接觀察培養(yǎng)細(xì)胞中的支原體污染情況。這種方法可以提供直觀的支原體形態(tài)信息,但設(shè)備要求較高。
5. 一步法恒溫支原體檢測(cè):使用特定的試劑盒,如Yeasen一步法恒溫支原體檢測(cè)試劑,采用等溫?cái)U(kuò)增技術(shù),通過顏色變化(由藍(lán)紫色變?yōu)樘焖{(lán)色)進(jìn)行快速檢測(cè)。
蘇州細(xì)胞支原體預(yù)防試劑價(jià)格支原體檢測(cè)PCR法和LAMP方法的優(yōu)劣勢(shì)比較。
支原體去除的原理通常涉及以下幾個(gè)方面:
1. 抗*素作用:使用特定的抗*素制劑來抑制支原體的生長(zhǎng)和繁殖。例如,含有喹諾酮類、四環(huán)素衍生物類和大環(huán)內(nèi)酯類抗*素的混合制劑,這些抗*素能夠抑制支原體的DNA和蛋白合成。
2. 破壞細(xì)胞膜:支原體去除劑中的抑菌肽(AMPs)成分通過破壞支原體細(xì)胞膜的完整性,導(dǎo)致支原體細(xì)胞死亡。
3. 抑制DNA復(fù)制:支原體去除劑通過抑制支原體DNA回旋酶活性,有效抑制支原體DNA的復(fù)制,從遺傳物質(zhì)著手徹底殺滅支原體。
4. 協(xié)同作用:某些支原體去除劑利用抑菌肽(AMPs)和穿膜肽(CPPs)的協(xié)同作用來除去支原體,穿膜肽能夠幫助抑菌肽更有效地穿透細(xì)胞膜,增強(qiáng)其殺滅支原體的能力。
支原體檢測(cè)實(shí)驗(yàn)方法需要考慮以下幾個(gè)關(guān)鍵點(diǎn):
1. 樣本的采集與處理:確保樣本的采集和處理過程符合無菌操作規(guī)范,避免交叉污染。
2. 實(shí)驗(yàn)操作的標(biāo)準(zhǔn)化:制定詳細(xì)的實(shí)驗(yàn)操作流程,包括樣本接種、培養(yǎng)條件、觀察時(shí)間點(diǎn)等,以保證實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性和準(zhǔn)確性。
3. 使用適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基:根據(jù)支原體的特性選擇合適的培養(yǎng)基,如支原體肉湯4. 培養(yǎng)基、精氨酸支原體肉湯培養(yǎng)基等,并確保培養(yǎng)基的靈敏度和特異性。
5. 設(shè)置對(duì)照組:實(shí)驗(yàn)中應(yīng)包括陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照,以驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)方法的有效性和排除假陽(yáng)性或假陰性結(jié)果。
細(xì)胞培養(yǎng)中污染了支原體會(huì)怎么樣?
qPCR法,即定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(QuantitativePolymeraseChainReaction)法,在支原體檢測(cè)中的應(yīng)用主要體現(xiàn)在以下幾個(gè)方面:
1. 快速定性檢測(cè):qPCR法可以快速檢測(cè)生產(chǎn)原料、細(xì)胞庫(kù)、病毒種子、病毒或細(xì)胞收獲液、治*用細(xì)胞中潛在的支原體污染。
2. 臨床樣本檢測(cè):qPCR法可用于檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室樣本及臨床樣本中的支原體,具有快速、特異性強(qiáng)、靈敏度高、穩(wěn)定性好等優(yōu)點(diǎn)。
3. 監(jiān)管要求:基于TaqMan的qPCR測(cè)定專門針對(duì)檢測(cè)細(xì)胞治*和復(fù)雜生物生產(chǎn)樣本中的支原體而開發(fā),其性能滿足或超出監(jiān)管要求,如10CFU/mL。
4. 藥物質(zhì)量控制:qPCR法提供早期檢測(cè)支原體污染的方法,適用于藥物質(zhì)量控制,具有快速、高度特異性、靈敏性,并符合國(guó)際準(zhǔn)則。
支原體檢測(cè)的樣本用什么合適?蘇州細(xì)胞支原體預(yù)防試劑價(jià)格
為什么要去除支原體?上海細(xì)胞培養(yǎng)支原體檢測(cè)試劑價(jià)格
qPCR法,即定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Quantitative Polymerase Chain Reaction)法,是一種高度靈敏和特異的分子生物學(xué)技術(shù),用于檢測(cè)和定量DNA序列。在支原體檢測(cè)中,qPCR法的原理主要包括以下幾個(gè)步驟:
1. DNA提?。菏紫葟拇郎y(cè)樣本中提取DNA,這可能包括細(xì)胞培養(yǎng)上清液或組織樣本中的支原體DNA。
2. 設(shè)計(jì)特異性引物:針對(duì)支原體的保守DNA序列,如16S rRNA基因,設(shè)計(jì)特異性的DNA引物。
3. 熒光標(biāo)記探針:使用熒光標(biāo)記的探針,該探針與目標(biāo)DNA序列互補(bǔ),能夠在PCR擴(kuò)增過程中與擴(kuò)增的DNA結(jié)合。
4. Ct值確定:Ct值(閾值循環(huán)數(shù))是指在PCR反應(yīng)中,熒光信號(hào)強(qiáng)度超過預(yù)定閾值的循環(huán)次數(shù)。Ct值越低,表示樣本中支原體DNA的量越多。
5. 定量分析:通過標(biāo)準(zhǔn)曲線法或相對(duì)定量法,將Ct值轉(zhuǎn)換為支原體DNA的定量結(jié)果。
qPCR法的優(yōu)勢(shì)在于其高靈敏度和特異性,能夠檢測(cè)到非常低水平的支原體污染,并且可以在短時(shí)間內(nèi)提供結(jié)果,這對(duì)于需要快速檢測(cè)的生物制品生產(chǎn)和細(xì)胞培養(yǎng)質(zhì)量控制非常重要
上海細(xì)胞培養(yǎng)支原體檢測(cè)試劑價(jià)格