近年來，外泌體的捕獲技術越來越多，微流體系也被用于外泌體提取，此方法能根據其物理和生化特性同時分離外泌體。采用這種方法獲得的樣品純度高，且可及時獲取外泌體用于疾病的相關檢測。在初次注射時外泌體粘附在微流控設備的內表面，并在隨后的PBS注射中沖洗掉。此方法采用的設備復雜，所需的樣本量取決于流動通道的長度。另外，樣品量的注入速率比較低，因此，對于大樣品量，將需要較長的處理時間。外泌體在包括瘤子在內的各種疾病的發(fā)病機理中具有重要的功能。目前，研究人員已經開發(fā)了多種方法來分離外泌體，離心技術仍然是常用方法，其他方法，例如過濾、磁珠分離和色譜法等，也顯示出獨特的優(yōu)勢，但目前仍然沒有一種公認有效的提取方法，研究人員應針對不同來源的樣本以及不同的下游分析選取較適宜的提取方案。外泌體的數(shù)量：人體中大約有1014個，近乎于平均每個細胞產生1000-10000個。湖北外泌體熒光標記

被特定部位的細胞獲取的瘤子外泌體可為腫細胞的轉移準備轉移前微環(huán)境。用肺轉傾向的腫細胞細胞來源的外泌體處理小鼠后可使骨轉傾向的腫細胞細胞重新定向。外泌體的蛋白質組學分析發(fā)現(xiàn)不同部位傾向性的腫細胞細胞來源的外泌體具有不同的整合素（integrin）表達譜，整合素α6β4和α6β1與肺轉有關，而整合素αvβ5與肝轉有關。敲低整合素α6β4和αvβ5可減少外泌體被靶部位細胞獲取，進而分別降低了肺和肝的轉移。進一步研究發(fā)現(xiàn)外泌體整合素被細胞獲取后活躍了Src的磷酸化和促炎的S100基因的表達。通過臨床數(shù)據分析顯示外泌體整合素可作為預測腫細胞轉移的部位傾向性的診斷指標。外泌體的提取的方式：PS親和法。干細胞外泌體circRNA測序度梯度離心法，用此種方法分離到的外泌體純度高。

細胞外囊泡是蛋白質、mRNA、miRNA和脂質運輸來完成細胞間通訊通路的重要媒介，根據它們的大小和發(fā)生分為三類，包括外泌體、微泡和凋亡小體。其中，外泌體是直徑大約為40-100nm的包裝囊泡，由多種細胞分泌，內含有特定的蛋白質、脂質、細胞因子或遺傳物質。來源于不同的組織的外泌體不只具有其特異性蛋白分子，而且還包含其行使功能的關鍵分子。近年來，隨著外泌體研究的不斷深入，它的應用已經涉及瘤子診療領域、醫(yī)學基礎和免疫領域、寄生蟲領域；臨床研究上已涉及心血管系統(tǒng)、內分泌代謝系統(tǒng)等。

外泌體（Exosomes）是細胞分泌到胞外的一種囊泡（ExtracellularVesicles，EVs），其大小為30-150nm，具有雙層膜結構和茶托狀形態(tài)，含有豐富的內含物（包括核酸、蛋白和脂質等），參與細胞間的分子傳遞。外泌體普遍存在于細胞培養(yǎng)上清以及各種體液中，包括血液、唾液、尿液、乳汁等，同時也存在于組織樣本中，如腦組織、肌肉組織、脂肪組織等。腦組織分離方法簡述：將腦組織剪成薄片，放入離心管中加上消化液進行消化，經水浴、反復輕輕上下顛倒，再用移液間斷緩慢吹吸至消化結束。隨后加入培養(yǎng)基于消化液中，混勻，置于冰上。再進行一系列的差速超速離心過程，包括除雜、濾膜過濾、超離等。結尾用PBS重懸外泌體，用重懸后的外泌體進行下面的透射電鏡（TEM）、納米粒徑追蹤分子（NTA）和markerWB鑒定。外泌體普遍參與細胞間物質運輸與信息傳遞，調控細胞生理活動。

外泌體是分泌的細胞外囊泡的主要群體，是具有生物活性的脂雙層囊泡，大小約為30-100nm，由不同類型的正常細胞和瘤子細胞自然產生和釋放。這些囊泡在細胞間通訊中起重要作用，并影響細胞外環(huán)境和免疫系統(tǒng)反應。外泌體通過內體途徑分泌到細胞外空間，并將各種生物活性分子（貨物）轉運至靶細胞。外泌體貨物的組成非常多樣化，包括各種免疫阻止和免疫刺激蛋白、趨化因子、細胞因子、細胞受體、脂質以及不同的核酸，例如miRNA和環(huán)狀RNA。建立外泌體分離、表征以及效價測定的標準化方法將是外泌體作為診斷和診療用途之前需要解決的問題。外泌體沒有calnexin

外泌體具有異質性，即使是同一種細胞分泌的外泌體都有可能具有比較大功能區(qū)別。湖北外泌體熒光標記

免疫印跡或蛋白質印跡是分析外泌體較常用的方法之一，其原理是外泌體上特異性抗原與抗體結合。首先對樣品進行處理將囊泡裂解并將蛋白質變性，變性后，通過SDS-PAGE分離蛋白質，然后將其轉移到硝酸纖維素膜或聚偏二氟乙烯（PVDF）膜上并暴露于針對目的抗原的抗體中。抗體特異性識別膜表面上的抗原，然后將膜暴露于第二抗體中。通過二抗的熒光標簽或與二抗偶聯(lián)的辣根過氧化物酶或堿性磷酸酶基團進行檢測。常用的標記蛋白為CD63、CD81、TSG101和ALIX等。但是此方法的特異性和重復性會受到所用抗體質量的限制。湖北外泌體熒光標記

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